類器官研究領域

自2009年Hans Clevers教授報道了弟一例類器官，共有11983篇關于類器官的研究論文發表（數據來源于PubMed），研究領域主要涉及腫瘤學和生物學，近4年來（2018-2022年），共發表10441篇論文發表，占整體發文量的87.1%。作為類器官領域的“獨角獸”Hans Clevers，共有263篇論文發表，部分論文發表在Nature、Cell等期刊。

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類器官簡介

類器官（organoid）：體外三維（3D）培養成體干細胞或多能干細胞的技術被稱之為“類器官”（Organoids）技術，所培養的組織類似物具有一定空間結構，并能模擬真實器官部分功能。主要來源于胚胎干細胞、多功能誘導干細胞、成體干細胞及腫瘤干細胞。

類器官培養及構建

類器官培養方式主要分為2類：浸潤式培養和氣液交界培養。

類器官的構建就像是在調制一杯“雞尾酒”。其主要原理是基于干細胞和發育生物學原理，根據胚胎發育和器官發生線索，模擬自然發育過程而分化形成特定譜系的微小器官。與傳統模型相比：蕞大程度模擬體內相應組織器官的空間結構和生理功能，而提供與人體高度一致的生理/病理系統。

以小腸類器官為例，2007年，Hans Clevers實驗室就通過lineage tracing實驗（細胞譜系示蹤技術）發現小腸和結腸的干細胞為Lgr5+細胞。2009年，荷蘭科學家Hans Clevers的團隊成功地在體外將Lgr5+腸道干細胞培養成包括隱窩樣區域和絨毛樣上皮區域的三維結構，即小腸類器官。這一結構包含所有終末分化細胞類型，能準確模擬腸道上皮生理情況，這一方法的建立既實現了腸上皮長期體外培養又可以維持腸上皮細胞原始分化能力，該技術已經逐漸被應用于干細胞、疾病模型以及再生藥物等相關研究。小腸類器官的培養可以通過多能誘導干細胞或胚胎干細胞來誘導分化，也可以取小腸的隱窩干細胞來誘導分化。目前大多數研究都是采用小腸隱窩干細胞來培養，因為該方法不僅獲取干細胞方便，對技術的要求不高，而且培養的類器官傳代次數更多，可以在體外長期培養長達2個月之久。具體培養方式見ppt原文。

類器官種類

類器官培養已應用于各種器官，包括：大腦（brain）、視杯（Optic Cup）、內耳（Inner Ear）、肺(lung)、肝(liver)、結腸（Colon）、腎（Kidney）、胰腺(Pancreatic)、前列腺(Prostate)、胃（Gastroids）、乳腺（galactophore），2023年1月，Hans Clevers團隊構建出非酒精性脂肪肝類器官模型，工程人肝細胞類器官使基于CRISPR的靶點發現和藥物篩選成為可能。

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類器官應用

類器官應用領域廣闊：類器官作為體外模型，在疾病發生機理、新靶點發現、診療新策略探索、藥敏檢測、新藥研發、再生醫學等多方向擁有廣泛的應用前景。其中肝類器官已被應用于藥物療效毒性以及輔助患者建立個體化治療方案等。我們以“利用肝臟類器官預測藥物誘導的磷脂質病”為例，介紹類器官的應用。

PL誘導劑：啊米卡星、琰酸胺碘酮、琰酸舍曲林和對yi酰氨基酚。啊米卡星、胺碘酮和舍曲林分別是弱、中度和強的PL誘導藥物。對yi酰氨基酚作為誘導PL的陰性對照藥物。

類器官培養：單個患者的人肝組織（0.5-1cm3）從首爾峨山醫療中心進行的肝切除術中獲得。手術切除后，組織在漢克斯蘋衡鹽溶液（HBSS）中保持在4℃，直到處理。參考前期文獻：組織用無菌剪刀切碎，用膠原酶D和Dnase I在無菌Earle蘋衡鹽溶液（EBSS）培養基中中消化。將分離的導管細胞與基質凝膠或還原生長因子BME 2（基底膜提取物）混合，每孔5000-10000個細胞接種于24孔板中。基質凝膠或BME固化后，每孔加入500µL培養基。基礎培養基：DMEM/F12，并包括各種補充劑。前3天，培養基中添加25 ng/mL重組人肝素、100 ng/mL Wnt3a和10µM Y27632分離導管細胞。然后用不含Noggin、Wnt3a或Y27632代替。在單個導管細胞變成一個類器官后，每5-7天以1：2-1：4的分裂比例進行傳代。在37℃的含有5%二氧化碳的潮濕氣氛中培養。

肝標志物表達：類器官與HepG2表達水平相當。采用實時熒光定量PCR（qPCR）檢測CYP3A4和白蛋白基因的表達情況。從人肝組織中提取的RNA作為陽性對照。CYP3A4在類器官細胞中的mRNA表達水平略高于HepG2細胞（圖a）。類器官細胞和HepG2細胞之間的白蛋白mRNA表達水平相當（圖b）。肝組織中CYP3A4和白蛋白的mRNA表達水平明顯高于類器官和HepG2培養系統。

糖原積累：采用PAS染色法檢測人肝類器官、HepG2細胞和人肝組織中糖原的積累情況。類器官呈明顯的陽性糖原染色，呈強烈的洋紅色。HepG2細胞的染色不如類器官細胞清晰。類器官細胞的細胞質中含有多糖或糖原、糖蛋白、糖脂等多糖或粘液物質，如圖所示。

蛋白表達：肝臟轉錄因子HNF4α在類器官中表達比HepG2強很多。用免疫熒光法在兩種培養系統中均可檢測到肝蛋白HNF4α。如圖a-c所示，人肝類器官蛋白呈陽性（綠色），強于HepG2細胞。在HepG2細胞的胞漿中呈非特異性陽性染色。通過免疫組化方法觀察了兩種培養系統中CYP3A4和CYP1A2的表達。如圖d-f所示，CYP3A4在人肝類器官中的表達比在HepG2細胞中更明顯。CYP1A2在兩種肝細胞培養中均明顯表達陽性（圖g-i）。

細胞活力測試：在培養48小時后，當暴露于高劑量的PL誘導藥物時，人肝臟類器官比HepG2細胞存活得更好。各PL藥物組的類器官和HepG2細胞的活力均發生了顯著變化。2D和3D培養的肝細胞均暴露于舍曲林。在20µM劑量的胺碘酮和舍曲林作用下，HepG2細胞的單層細胞顯示出明顯的細胞死亡，而在這些藥物濃度下，類器官的活性更高。對yi酰氨基酚在25µM或50µM水平下使用，在兩種培養系統中均未引起顯著的細胞活力變化。

白蛋白分泌水平：在PL誘導藥物存在的情況下，HepG2細胞的白蛋白分泌水平比肝類器官更明顯地下降（取決于其PL誘導潛能的強度）。兩種肝細胞培養系統均與10µM PL誘導藥物或25µM對yi酰氨基酚作為陰性對照孵育48 h。與HepG2細胞相比，類器官細胞保持了更穩定的白蛋白分泌能力。

形態學變化：為了評估PL導致的類器官和HepG2細胞培養系統的形態學變化，細胞用10µM的指示藥物或25µM的對yi酰氨基酚處理48小時，H&E染色。如圖所示，在兩種培養系統中，具有較高的PL誘導能力的藥物均可導致較高的細胞質液泡量。雖然這些液泡變化認為是藥物誘導的PL的結果，但這些由這種情況引起的空泡化實體類似于光鏡下組織載玻片處理過程中產生的脂質積累或偽影。

LAMP-2表達比較：LAMP-2免疫組化染色檢測磷脂積累（圖）。將細胞與10µM的PL誘導藥物（啊米卡星、胺碘酮或舍曲林）或25µM的對yi酰氨基酚孵育48小時。在相同條件下，與HepG2細胞相比，類器官細胞在細胞質中具有更明顯的LAMP-2陽性染色。舍曲林處理組的兩種細胞的細胞質染色陽性zui強。

PL證實：用透射電鏡證實了藥物誘導的肝臟類器官磷脂病（圖）。10µM胺碘酮處理48h后，類器官產生明顯的層狀體。

基因表達（LSS和P8 mRNA）的變化：LSS和P8為PL生物標記物。為了評估藥物誘導的PL的嚴重程度，采用qPCR方法檢測了特異性基因標記物的變化值。兩種培養體系中的細胞分別用胺碘酮（5µM，10µM）或舍曲林（5µM，10µM）處理48小時。研究發現，HepG2細胞對10µM舍曲林毒性非常敏感，因此在這種條件下不可能提取RNA。如圖所示，類器官的LSS和P8 mRNA表達水平均有上調。

血管化以外的難點還包括模擬腫瘤和免疫環境的相互作用關系。2019年Nature Protocol期刊發表了腫瘤類器官和免疫細胞共同培養的相關protocol，可以體現和模擬出腫瘤微環境的部分特征。以上皮類器官和免疫細胞共培養模型為例，可通過在培養基中添加活化的免疫細胞、在組織消化成單細胞后和免疫細胞共同生長、添加ECM中的重組細胞因子等方法重塑類器官和免疫細胞的相互作用。

相比于單個類器官，類器官系統的構建能夠對藥物療效和潛在毒性做出更完整全面的評估。目前類器官僅能檢測出藥物對于腫瘤的抑制效果，對于其他器官組織是否存在其他副作用和安全性風險并不能做出預判。

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